Форэкс хлор комплит инструкция по применению таблица концентрации

Форэкс хлор комплит инструкция по применению таблица концентрации

3. Инструкция по применению дезсредства ФОРЭКС-ХЛОР КОМПЛИТ:

№ 012/2008 от 2008

4. Химический состав дезсредства ФОРЭКС-ХЛОР КОМПЛИТ:
Хлорсодержащие (выделяющие активный хлор), Вспомогательные компоненты

Действующие вещества:
Гипохлорит натрия , Вспомогательные компоненты

Заявленный показатель активности водородных ионов (pH): от 10.0 до 13.0

5. Фacовка:
жидкий концентрат — 0.2 дм3, 0.5 дм3, 1 дм3, 5 дм3, 10 дм3, 20 дм3, 40 дм3, 200 дм3;

6. Срок годности: в упаковке — 1 года, в рабочем растворе — 14 дней

Диапазон цен на дезсредство: от 129.8 руб. за 1л/кг до 143.23 руб. за 1л/кг. перейти ко всем предложениям

Основные режимы применения дезсредства ФОРЭКС-ХЛОР КОМПЛИТ

Стоимость 1л рабочего раствора расчитана исходя из средней стоимости за 1л/кг концентрата.

(Концентрация указана по активному хлору)

Режим Конц / эксп
Дезинфекция поверхностей по бактериям (исключая туберкулез) 0.1 % / 30 мин.
Дезинфекция поверхностей по вирусным инфекциям 0.1 % / 30 мин.
0.1 % / 45 мин.
Дезинфекция поверхностей по кандидозу 0.1 % / 30 мин.
Дезинфекция поверхностей по дерматофитам 0.25 % / 30 мин.
Дезинфекция поверхностей по туберкулезу 0.25 % / 30 мин.
Дезинфекция ИМН при бактериальных, вирусных инфекциях и кандидозе 0.1 % / 15 мин.
0.25 % / 10 мин.
0.5 % / 5 мин.
Дезинфекция, совмещенная с ПСО ИМН при бактериальных, вирусных инфекциях и кандидозе Нет режима
Предстерилизационная очистка ИМН Нет режима
ДВУ эндоскопов Нет режима
Стерилизация изделий медицинского назначения Нет режима
Дезинфекция крови 100 % / 30 мин.
100 % / 60 мин.
100 % / 120 мин.
Дезинфекция мокроты 100 % / 60 мин.
100 % / 120 мин.
100 % / 30 мин.
Дезинфекция фекалий 100 % / 120 мин.
100 % / 30 мин.
100 % / 60 мин.

7. Расход дезсредства на поверхности:

Способ применения Объем Ед. изм.
Расход средства на поверхности способом орошение «Квазар» 150 мл/м2
Расход средства на поверхности способом орошение гидропультом 300 мл/м2
Расход средства на поверхности способом протирание 100 мл/м2

8. Особые свойства:

9. Класс опасности:
при введении в желудок — 4; при нанесении на кожу — 4; рабочего раствора — 4

10. Активно в отношении:

Бактерии — Mycobacterium tuberculosi, Анаэробныe инфекции, Грамотрицательные бактерии, Грамположительные бактерии;
Вирусы — ВИЧ, Гепатита В, Полиомиелит;
Патогенные грибы — Кандида, Плесневые грибы, Трихофитон;
Моющие свойства;

11. Сфера применения дезсредства согласно инструкции:
ЛПУ, Клинические лаборатории, Станции переливания крови, Бактериологические лаборатории, Детские учреждения (детсады, школы и т.п.), Пенитенциарные учреждения, Инфекционные очаги, Предприятия общественного питания, Предприятия продовольственной торговли, Потребительские рынки, Коммунальные объекты (бани, бассейны, гостиницы, общественные туалеты и т.п.), Учреждения соцобеспечения, Парикмахерские, Косметические и (или) массажные салоны, Прачечные, Санитарный транспорт, В быту населением, Спортивные и культурно-оздоровительные комплексы

12. Объекты обработки (инструкция на дезсредство № 012/2008 от 2008):
Белье нательное, Белье постельное, Игрушки, ИМН из металлов, резин на основе натурального и силиконового каучука, стекла, пластмасс, ИМН обычные, Инструменты стоматологические, Инструменты хирургические, Лабораторная посуда, Поверхности в помещениях, Предметы ухода за больными, Санитарно-техническое оборудование, Санитарный транспорт, Уборочный инвентарь

13. Роспотребнадзор:
свидетельство о регистрации дезсредства
смотреть на официальном сайте fp.crc.ru

14. Список всех дезсредств

производителя ООО НПК «Альфа», Россия…

Концентрат. Жидкое средство на основе гипохлорита натрия

Состав: гипохлорит натрия (в пересчете на «активный хлор» 4,0%), стабилизаторы, антикоррозионная, комплексообразующая и моющая добавки, отдушка, вода.

Форма выпуска: канистра 5л; флакон 1 л.

Срок годности: средства – 2 года, рабочих растворов – 14 суток

  • Преимущества
  • Характеристики

Общие преимущества

  • Активность: бактерицид (в т. ч. в отношении возбудителей ВБИ и анаэробных инфекций), туберкулоцид, вирулицид, фунгицид, ООИ (особо опасные инфекции)
  • Овоцидные свойства
  • Эффективно в отношении плесени
  • Обладает моющими и отбеливающими свойствами
  • Демеркуризатор
  • Обеззараживание вакцин
  • Режимы для стирки и дезинфекции
  • Режимы дезинфекции скорлупы пищевых яиц
  • Экономически эффективно для обеззараживания отходов
  • Широкий спектр обрабатываемых объектов

Поверхности в помещениях

Текущая дезинфекция

Вирусная и бактериальная этиология

Санитарно-техническое оборудование

Текущая дезинфекция

Вирусная и бактериальная этиология

Поверхности в помещениях

Генеральная уборка

Соматические учреждения, процедурные кабинеты

Подробно режимы дезинфекции рабочими растворами средства «ФОРЭКС-ХЛОР КОМПЛИТ (4% а.х.+ПАВ) изложены в Инструкции по применению №012/2018

Рекомендуемые товары для пола и стен

Описание ФОРЭКС-ХЛОР КОМПЛИТ (4%а.х.+ПАВ)

ФОРЭКС-ХЛОР КОМПЛИТ (4%а.х.+ПАВ) – концентрат. Жидкое
средство на основе гипохлорита натрия. ФОРЭКС-ХЛОР КОМПЛИТ (4%а.х.+ПАВ) купить в Омске по оптимальной цене.

— гипохлорит натрия (в пересчете на «активный хлор» 4,0%);

— антикоррозионная, комплексообразующая и моющая добавки;

Преимущества ФОРЭКС-ХЛОР КОМПЛИТ:

— активность: бактерицид (в т. ч. в отношении возбудителей
ВБИ и анаэроб-ныхинфекций), туберкулоцид, вирулицид, фунгицид, ООИ (особо
опасные инфекции);

— эффективно в отношении плесени;

— обладает моющими и отбеливающими свойствами;

— режимы для стирки и дезинфекции;

— режимы дезинфекции скорлупы пищевых яиц;

— экономически эффективно для обеззараживания отходов;

— широкий спектр обрабатываемых объектов.

Режимы дезинфекции:

Концентрация, по а. х. , %

Время экспозиции, мин

Количество средства, мл

Количество воды, мл

Способ обработки
Расход

Поверхности в помещениях

Вирусная и бактериальная этиология

Протирание
100 мл/м2

Вирусная и бактериальная этиология

Протирание
200 мл/м2

Поверхности в помещениях

Протирание
100 мл/м2

Подробно режимы дезинфекции рабочими растворами средства
«ФОРЭКС-ХЛОР КОМПЛИТ (4% а.х.+ПАВ) изложены в Инструкции по применению
№012/2018

Форма выпуска: флакон 1 л *12 шт.; канистра 5л *3шт. Срок годности: средства – 2 года, рабочих растворов – 14
суток.

Присоединяясь к настоящему Соглашению и оставляя свои данные на Сайте название_сайта (далее – Сайт), путем заполнения полей форм обратной связи Пользователь:

  • подтверждает, что все указанные им данные принадлежат лично ему,
  • подтверждает и признает, что им внимательно в полном объеме прочитано Соглашение и условия обработки его персональных данных, указываемых им в полях форм обратной связи, текст соглашения и условия обработки персональных данных ему понятны;
  • дает согласие на обработку Сайтом предоставляемых в составе информации персональных данных в целях заключения между ним и Сайтом настоящего Соглашения, а также его последующего исполнения;
  • выражает согласие с условиями обработки персональных данных без оговорок и ограничений.
Читать статью  Forex — получение прибыли вне зависимости от рыночного тренда

Пользователь дает свое согласие на обработку его персональных данных, а именно совершение действий, предусмотренных п. 3 ч. 1 ст. 3 Федерального закона от 27.07.2006 N 152-ФЗ «О персональных данных», и подтверждает, что, давая такое согласие, он действует свободно, своей волей и в своем интересе. Согласие Пользователя на обработку персональных данных является конкретным, информированным и сознательным.

Настоящее согласие Пользователя признается исполненным в простой письменной форме, на обработку следующих персональных данных: фамилии, имени, отчества; года рождения; места пребывания (город, область); номеров телефонов; адресов электронной почты (E-mail).

Пользователь, предоставляет название_сайта право осуществлять следующие действия (операции) с персональными данными: сбор и накопление; хранение в течение установленных нормативными документами сроков хранения отчетности, но не менее трех лет, с момента даты прекращения пользования услуг Пользователем; уточнение (обновление, изменение); использование; уничтожение; обезличивание; передача по требованию суда, в т.ч., третьим лицам, с соблюдением мер, обеспечивающих защиту персональных данных от несанкционированного доступа.

Указанное согласие действует бессрочно с момента предоставления данных и может быть отозвано Вами путем подачи заявления администрации сайта с указанием данных, определенных ст. 14 Закона «О персональных данных». Отзыв согласия на обработку персональных данных может быть осуществлен путем направления Пользователем соответствующего распоряжения в простой письменной форме на адрес контактной электронной почты указанной на сайте название_сайта.

Сайт не несет ответственности за использование (как правомерное, так и неправомерное) третьими лицами Информации, размещенной Пользователем на Сайте, включая её воспроизведение и распространение, осуществленные всеми возможными способами. Сайт имеет право вносить изменения в настоящее Соглашение. При внесении изменений в актуальной редакции указывается дата последнего обновления. Новая редакция Соглашения вступает в силу с момента ее размещения, если иное не предусмотрено новой редакцией Соглашения. Ссылка на действующую редакцию всегда находится на страницах сайта: название_сайта.ru

К настоящему Соглашению и отношениям между пользователем и Сайтом, возникающим в связи с применением Соглашения подлежит применению право Российской Федерации.»

Цель исследования. Изучение чувствительности разных видов возбудителей внутрибольничных гнойно-септических инфекций (ГСИ) к разным группам дезинфектантов и кожных антисептиков.
Материалы и методы. На тест-поверхностях (стекло, металл, пластик, дерево, клеенка) и в растворе изучена чувствительность к 18 дезинфицирующим средствам 238 штаммов возбудителей ГСИ 13 видов, изолированных от пациентов и из больничной среды двух акушерских, трех реанимационных и одного терапевтического стационара.
Результаты. Определена чувствительность К. pneumoniaе и S. haemolyticus, выделенных в акушерском стационаре, по отношению к 13 кожным антисептикам в эксперименте при гигиенической обработке рук, искусственно контаминированных изучаемыми микроорганизмами. На тест-поверхностях количество штаммов возбудителей внутрибольничных ГСИ, устойчивых к дезинфектантам, составило 1,3 ± 0,7%, не полностью чувствительных – 14,7 ± 2,3%. В растворе доля устойчивых штаммов оказалась равной 2,6 ± 1,8%, штаммов с неполной чувствительностью – 2,6 ± 1,8%. Суммированный показатель устойчивости и неполной чувствительности возбудителей внутрибольничных ГСИ к дезинфектантам на тест-поверхностях и в растворе составил 13,7 ± 1,9 на 100 штаммов.
Заключение. Чаще всего приобретенная устойчивость и неполная чувствительность формируется у P. аeruginosa, K. рneumoniaе, S. epidermidis и S. haemolyticus к препаратам, содержащим четвертично-аммониевые соединения, в тех отделениях лечебно-профилактических организаций, где регистрируются случаи ГСИ. Устойчивость возбудителей ГСИ чаще вырабатывается к кожным антисептикам на водной основе и к спиртосодержащим препаратам с низким (менее 58%) содержанием этилового или изопропилового спирта.

В настоящее время следует считать доказанной возможность формирования устойчивости возбудителей внутрибольничных гнойно-септических инфекций (ГСИ) ко всем группам дезинфицирующих средств (ДС) [1, 2]. В связи с этим в СанПин 2.1.3.2630-10 [3] введено положение о необходимости проведения в лечебно-профилактических организациях (ЛПО) мониторинга устойчивости циркулирующих микроорганизмов к применяемым ДС с последующей их ротацией при необходимости. Вместе с тем до настоящего времени на федеральном уровне методика определения чувствительности микроорганизмов к ДС в России остается не утвержденной. Применение же отдельными лабораториями произвольных методик оценки чувствительности микроорганизмов к ДС не позволяет корректно сопоставлять соответствующие результаты, полученные на разных территориях и в разных ЛПО. Не случайно показатель устойчивости возбудителей ГСИ к ДС, по данным научной литературы, варьирует чрезвычайно широко – о т 0 до 77 %.

Предполагается, что среди возбудителей ГСИ резистентность к ДС чаще вырабатывает синегнойная палочка [4, 5]. Отмечается, что устойчивость условно-патогенных микроорганизмов (УПМ) чаще формируется по отношению к ДС на основе четвертично-аммониевых соединений (ЧАС) [1, 2]. Вместе с тем сравнительные данные оценки резистентности разных видов УПМ к разным группам ДС, как правило, не учитывают эпидемическую ситуацию, на фоне которой были отобраны бактерии.

Приобретенная устойчивость возбудителей ГСИ может формироваться и по отношению к антисептикам (АС). Однако такие сообщения пока единичны [6, 7].

Цель работы – изучение чувствительности разных видов возбудителей внутрибольничных ГСИ к разным группам дезинфектантов и кожных антисептиков.

Материалы и методы

На тест-поверхностях (стекло, металл, пластик, дерево, клеенка), в соответствии с методическими рекомендациями [8, 9], изучена чувствительность к 18 ДС 238 штаммов возбудителей ГСИ 13 видов (Кlebsiella pneumoniaе, Рseudomonasaeruginosa, Escherichiacoli, Еnterobactercloacae, Citrobacterkoseri, Acinetobacterbaumanii, Staphylococcusaureus, S . warneri,, S. еpidermidis, S . cohnii, S. haemolyticus, Stenotrophomonasmaltophilia, Burkholderia cepacia), изолированных от пациентов и из больничной среды двух акушерских, трех реанимационных и одного терапевтического стационара. Использованы ДС на основе ЧАС (ЗД-септ, сепотосан-Т); ЧАС и амина (Амиксан), ЧАС и альдегида (Клиндезин-специаль, МИРОДЕЗ универ, Абсолюцид форте); ЧАС и гуанидина (МИРОДЕЗ пур); ЧАС, амина и гуанидина (Амиксидин, Фрисепт-Гамма); альдегида (КОМБИ-ИНСТРУМЕНТ-N), амина и гуанидина (Дезофран); хлорсодержащие ДС, содержащие дихлорантин или натриевую соль дихлоризоциануровой кислоты (Форэкс-Хлор комплит, Сульфохлорантин-Д, УльтраХлорантин, Хлормисепт-эконом); кислородсодержащие (БэбиДез Ультра, ЭКОБРИЗ окси, препарат Х). Кроме того, в растворе к 12 ДС ( сепотосан-Т, Амиксан, МИРОДЕЗ универ, Абсолюцид форте, Амиксидин, Фрисепт-Гамма, КОМБИ-ИНСТРУМЕНТ-N, Форэкс-Хлор комплит, Сульфохлорантин-Д, УльтраХлорантин, БэбиДез Ультра, ЭКОБРИЗ окси) изучена устойчивость 76 штаммов УПМ 7 видов (К. pneumoniaе, Р. aeruginosa, A. baumanii, S. aureus, S. еpidermidis, S. cohnii, S. haemolyticus). Для оценки качества ДС оценивали эффективность их действия в отношении музейных тест-культур (E. coli № 1257 и S. aureus № 906). Использовали предусмотренные инструкциями антибактериальные концентрации ДС (0,01–1%) и экспозиции обработки (15–60 мин). Для нейтрализации ДС применяли 3% твин-80 с 0,3% лецитином. Опыты ставили в трех повторах при условии получения однотипных результатов, при разнотипных результатах исследования повторяли до 8 раз. Общее количество исследований с учетом повторов составило более 5 000.

Читать статью  Мониторинг обменников Exnode. Взгляд в мир криптовалютных обменников

Штамм микроорганизмов считали чувствительным к ДС при отсутствии роста микроорганизмов или при росте на питательной среде до 300 КОЕ/мл: полная чувствительность – при отсутствии роста, неполная чувствительность – при наличии роста (100–299 КОЕ/мл – дезинфектант оказывает суббактерицидное действие, 1–99 КОЕ/мл – неполное бактерицидное действие). Штамм считали устойчивым к ДС в изучаемом режиме при росте 300 и более КОЕ/мл.

Рассчитывали долю штаммов, устойчивых к ДС, в % от общего количества изученных микроорганизмов.

Антимикробную эффективность 13 кожных АС изучали в отношении К. pneumoniaе и S. haemolyticus, циркулирующих в акушерском стационаре на фоне регистрации случаев ГСИ у новорожденных. Параллельно проведена оценка АС в отношении эталонных тест-культур – E. coli (№ 1257) и S. aureus (№ 906). Оценивали действие АС, содержащих: а) спирт (Альфасептин); б) спирты (этиловый или изопропиловый) в сочетании с ЧАС (Клиндезин элит плюс, НИКА-АНТИСЕПТИК-ЭЛИТ, АХД 2000-экспресс, Триосепт-ОЛ, Скиния, Клиндезин-элит-Р, Диасептик 30 ДВС, ЭКОБРИЗ антисептик) либо с ЧАС и гуанидином (Клинэкс); в) ЧАС в комбинации с амином (Бетасептин) либо гуанидином (Триосепт-Аква, Миродез мусс). Антибактериальную эффективность АС оценивали по результатам экспериментального изучения эффективности гигиенической обработки искусственно контаминированной кожи рук с учетом методических рекомендаций «Методы лабораторных исследований и испытаний дезинфекционных средств для оценки их эффективности и безопасности» [8]. Опыты проводили в трех повторах, при разнотипных данных – повторяли до 8 раз. По результатам трех однотипных опытов рассчитывали среднее количество КОЕ/мл. АС считали эффективным в отношении изучаемых микроорганизмов, если снижение обсемененности кожи в опыте по сравнению с контролем составляло 99,99% и более. Соответственно штамм считали устойчивым к АС в случае, когда снижение обсемененности кожи в опыте по сравнению с контролем происходило менее чем на 99,99%.

Статистическую обработку материалов проводили с использованием непараметрических методов – критерия соответствия, а при малых количествах наблюдений – точного метода Фишера [10]. Различия показателей считали статистически значимыми (p < 0,05) при значении критерия соответствия ≥ 3,8, критерия Фишера – < 0,05.

Результаты и обсуждение

Из 18 изученных ДС 17 препаратов в отношении музейных тест-культур (E. coli 1257 и S. aureus 906) обладали полным бактерицидным действием. В то же время кислородсодержащий препарат Х не соответствовал заявленному качеству – выявлен рост S. аureus на стекле, пластике, клеенке и металле в количестве от 1000 до 2000 КОЕ/мл и в растворе – 67 КОЕ/мл в среднем. В связи с этим результаты изучения устойчивости УПМ к указанному ДС были из последующего анализа исключены.

Количество штаммов УПМ, устойчивых к ДС и не полностью чувствительных, составило на тест-поверхностях соответственно 1,3 ± 0,7 и 14,7 ± 2,3%, в растворе – 2,6 ± 1,8% (табл. 1). Неполная чувствительность чаще проявлялась в неполном бактерицидном действии, реже – в суббактерицидном.

Таблица 1.

Примечание. n – количество штаммов.

Устойчивые и не полностью чувствительные штаммы были обнаружены соответственно на клеенке – в 1,4 ± 0,7 и 5,5 ± 1,4% опытов и на пластике – в 1,4 ± 0,7 и 5,0 ± 1,4%. На дереве выявлены лишь не полностью чувствительные – в 4,2 ± 1,6% случаев. На поверхности металла и стекла все исследованные штаммы микроорганизмов оказались чувствительными к ДС. В растворе, как уже было отмечено, показатель устойчивости и неполной чувствительности составил 2,6 ± 1,8 и 2,6±1,8% соответственно.

Частота приобретенной резистентности разных видов возбудителей ГСИ к ДС была неодинаковой. Устойчивость и одновременно неполная чувствительность к ДС на тест-поверхностях выявлена лишь у K. рneumoniaе и S. haemolyticus. Доля устойчивых штаммов данных видов УПМ составила 3,1 и 2,1%, штаммов с неполной чувствительностью – 10,9 и 31,3%. Неполная чувствительность была отмечена, кроме того, у таких бактерий, как P. aeruginosa(17,0 %), S. warneri(33,3%), S. epidermitis(11,8%) S. cohnii(20,0%) и S. aureus(6,3%). Чувствительными к ДС во всех случаях оказались A. baumanii, E. coli, E. cloacae, S. maltophilia, B. ceracia, C. koseri. Устойчивость в растворе, как и на поверхностях, выявлена у P. aeruginosa (4,8% штаммов), а также у S. epidermidis ( 20,0%), неполная чувствительность – у A. baumanii (в 12,5% случаев) и S. cohnii (в 20,0 %). В сумме доля устойчивых и не полностью чувствительных штаммов P. аeruginosa. K. рneumoniaе, S. epidermidisи S. haemolyticusна поверхностях и в растворе составила соответственно 11,2 ± 3,3, 13,6 ± 4,1, 18,2 ± 8,2 и 29,6 ± 6,2, тогда как доля остальных возбудителей в среднем оказалась равной лишь 3,6 ± 2,2 (p < 0,05 во всех случаях).

На тест-поверхностях наиболее высокие показатели устойчивости микроорганизмов были обнаружены по отношению к ЧАС-содержащим дезинфектантам. Так, к ДС, содержащих только ЧАС, доля устойчивых и имеющих неполную чувствительность бактерий составила соответственно 16,7 и 25,0%. Доля устойчивых и не полностью чувствительных бактерий в отношении препаратов, состоящих из ЧАС, амина и гуанидина, оказалась равной 1,1 и 19,5%. К ДС, представляющим комбинацию ЧАС и альдегида, была отмечена неполная чувствительность в 18,2% случаев. В целом доля УПМ, устойчивых к ДС, в состав которых входили ЧАС, составила 2,3 ± 1,3%, не полностью чувствительных – 17,8 ± 3,5%. При оценке чувствительности возбудителей ГСИ к другим ДС отмечена лишь неполная чувствительность бактерий к кислородсодержащим ДС, препаратам на основе амина и гуанидина, а также к сульфохлорантину, действующим веществом которого является дихлорантин, и к ультрахлорантину, содержащему натриевую соль дихлоризоциануровой кислоты. В растворе устойчивость выявлена только к ЧАС в комбинации с амином и гуанидином в 14,3% случаев. Неполная чувствительность обнаружена по отношению к хлорсодержащим препаратам в 9,1% случаев и к альдегидсодержащему препарату – в 1 случае. По отношению к ДС, содержащим ЧАС, доля устойчивых и не полностью чувствительных штаммов на тест-поверхностях и в растворе в целом оказалась равной 16,3 ± 2,7%, тогда как к другим группам ДС в среднем составила лишь 9,6 2,5% (p < 0,05).

Читать статью  Signals on Forex: Where to Search, How to Find, Filter, and Create?

Возбудители ГСИ, характеризующиеся устойчивостью и неполной чувствительностью, были выявлены только в тех ЛПО, где регистрировались случаи ГСИ (табл. 2). Так, в акушерских стационарах в период проведения работы были зарегистрированы 2 хронические эпидемические ситуации, вызванные K. pneumoniaе и S. Haemolyticus [11]. Устойчивые и не полностью чувствительные культуры на тест-поверхностях в указанных отделениях были изолированы соответственно в 1,7 и 14,2% случаев. В реанимационных отделениях, где по результатам изучения медицинской документации показатель заболеваемости ГСИ достигал 468 на 1000, были обнаружены не полностью чувствительные УПМ на тест-поверхностях в 22,7% случаев. В терапевтическом отделении, где случаи ГСИ отсутствовали, все микроорганизмы на тест-поверхностях оказались чувствительными к ДС. В растворе устойчивые и не полностью чувствительные культуры были выявлены только в отделениях реанимации – в 3,6 и 5,4% случаев соответственно. В целом доля штаммов, устойчивых и не полностью чувствительных к ДС, на поверхностях и в растворе составила в акушерских отделениях14,3 ± 2,5%, в реанимационных –14,0 ± 3,5%, в терапевтическом – 0%.

Таблица 2.

Примечание. n – количество штаммов; 1 – тест-поверхности, 2 – раствор, 3 – всего.

Из числа УПМ, изолированных от пациентов, были выделены только бактерии с неполной чувствительностью (в 5,7 ± 3,9% случаев), тогда как в больничной среде устойчивые культуры были обнаружены в 1,8 ± 0,8% случаев и не полностью чувствительные – в 12,6 ± 1,9%. В целом доля устойчивых и не полностью чувствительных на поверхности и в растворе штаммов, выделенных из внешней среды ЛПО (14,4 ± 2,1%), оказалась в 2,5 раза выше доли микроорганизмов, изолированных от пациентов (5,7 ± 3,9 %; р < 0,05).

Кожные АС в отношении тест-штаммов E. Сoli и S. аureus в большинстве случаев были эффективны – роста микроорганизмов не наблюдалось. Исключение составил лишь водный АС, содержащий ЧАС в комбинации с амином, эффективность которого в отношении E . coli № 1257 составила 99,1%. Иные результаты были получены при изучении чувствительности к АС клинических штаммов бактерий (табл. 3). K. рneumoniaе и S. haemolyticus были чувствительны к препаратам с концентрацией спирта более 58% (Альфасептин, НИКА-АНТИСЕПТИК-ЭЛИТ, АХД 2000-экспресс, Триосепт-ОЛ, ЭКОБРИЗ антисептик, Скиния), а также к препаратам Триосепт-Аква и Миродез мусс, включающим в качестве действующего вещества полигуанидин и ЧАС. В то же время чувствительность внутрибольничных штаммов к АС, не содержащим или содержащим небольшое количество спирта, была в большинстве случаев низкой. Так, эффективность водного Бетасептина по отношению к K. рneumoniaе и S. Haemolyticus составила соответственно лишь 96,0 и 37,1%, Диасептика 30 ДВС (30% спирта) – 99,1 и 55,4%. Исключение составил только Клиндезин-элит-Р, эффективность которого, несмотря на относительно высокое (60%) содержание спирта, оказалась также недостаточной – 99,1 и 80,5%.

Таблица 3.

Примечание. В ряде случаев фоновое количество микроорганизмов повторяется в связи с тем, что если в один день оценивали эффективность нескольких АС, то контроль (в трех повторах) проводили только один раз.

Выводы

На тест-поверхностях количество штаммов возбудителей внутрибольничных ГСИ, устойчивых к дезинфектантам, составило 1,3 ± 0,7%, не полностью чувствительных – 14,7 ± 2,3%. В растворе доля устойчивых штаммов оказалась равной 2,6 ± 1,8%, штаммов с неполной чувствительностью – 2,6 ± 1,8%. Суммированный показатель распространенности устойчивости и неполной чувствительности возбудителей внутрибольничных ГСИ к дезинфектантам на тест-поверхностях и в растворе составил 13,7 ± 1,9 на 100 штаммов.

Чаще всего приобретенная устойчивость и неполная чувствительность формируется у P. аeruginosa, K. рneumoniaе, S. epidermidisи S. haemolyticusк препаратам, содержащим ЧАС, в тех отделениях ЛПО, где регистрируются случаи ГСИ.

Устойчивость возбудителей ГСИ чаще вырабатывается к кожным антисептикам на водной основе и к спиртосодержащим препаратам с низким (менее 58%) содержанием этилового или изопропилового спирта.

1. Алексеева И.Г. Особенности формирования устойчивости условно-патогенных микроорганизмов к дезинфектантам. Автореф. дис. … канд. мед. наук. Н. Новгород, 2009.
2. Благонравова А.С. Научные, методические и организационные основы мониторинга устойчивости микроорганизмов к дезинфицирующим средствам в рамках эпидемиологического надзора. Автореф. дис. … д-ра мед. наук. Н. Новгород, 2012.
3. Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность. СанПин 2.1.3.2630-10.
4. Кафтырева Л.А., Егорова С.А., Макарова М.А. Резистентность к дезинфектантам энтеробактерий – возбудителей зооантропонозных инфекций. Дезинфекционное дело 2011; 3: 42–46.
5. Ковалишена О.В. Эколого-эпидемиологические особенности госпитальных инфекций и многоуровневая система эпидемиологического надзора. Автореф. дис.… д-ра мед. наук. Н. Новгород, 2009.
6. Афиногенов Г.Е., Афиногенова А.Г. Современные подходы к гигиене рук медицинского персонала. Клин. микробиол. и антимикроб. химиотер. 2004; 6(1): 65–70.
7. Красильников А.П. Справочник по антисептике. Минск: «Вышэйшая школа», 1995.
8. Методы лабораторных исследований и испытаний дезинфекционных средств для оценки их эффективности и безопасности. Руководство Р 4.2.2643-1. М., 2010.
9. Шкарин В.В., Ковалишена О.В., Воробьева О.Н. и др. Способ определения чувствительности микроорганизмов к дезинфицирующему средству (варианты). Патент РФ на изобретение № 2378363. Заявитель и патентообладатель ГОУ ВПО НижГМА – № 2008123115; заявл. 10.06.2008; зарег. 10.01.2010..
10. Урбах В.Ю. Статистический анализ в биологических и медицинских исследованиях. М.: Медицина, 1975.
11. Сергевнин В.И., Зуева Н.Г., Клюкина Т.В. Роль госпитального штамма возбудителей и рук медицинского персонала в формировании эпидемического процесса гнойно-септических инфекций новорожденных. Мед. альманах 2012; 2: 44–46.

Сергевнин Виктор Иванович – д-р мед. наук, проф. каф. эпидемиологии с курсом гигиены и эпидемиологии фак-та повышения квалификации и профессиональной переподготовки специалистов Пермской государственной медицинской академии им. академика Е.А. Вагнера Минздрава России
Адрес: 614990, Пермь, ул. Петропавловская, д. 26
Телефон: (342) 233-40-15
E-mail: viktor-sergevnin@mail.ru

Сведения об авторах:
Клюкина Татьяна Витальевна – врач-эпидемиолог МСЧ № 15 Управления федеральной службы безопасности России по Пермскому краю; epidemiolog160@gmail.com
Волкова Эльвира Олеговна – зав. бактериологической лабораторией Пермского краевого госпиталя для ветеранов войн; gosp_epidem@mail.ru
Решетникова Наталья Ивановна – врач-бактериолог Пермского краевого госпиталя для ветеранов войн; gosp_epidem@mail.ru
Зуева Наталья Геннадьевна – зав. службой эпидемиологов Пермской краевой клинической больницы; nzueva@dom.raid.ru
Авдеева Нина Сергеевна – зав. бактериологической лабораторией городской клинической больницы № 7 Перми; permgkb7@mail.ru

Источник https://rukovodstvorus.ru/foreks-hlor-komplit-instrukcziya-po-primeneniyu-tablicza-konczentraczii/

Источник

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *